اثر hCG، اواپریم و اواریم بر بازدهی تکثیر مصنوعی مولدین ماهی سوف حاج طرخان (Perca fluviatilis)

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 کارشناس ارشد شیلات، مرکز بازسازی و حفاظت از ذخایر ژنتیکی ماهیان استخوانی شهید انصاری، رشت، ایران

2 کارشناس ارشد شیلات، گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه‌سرا، ایران

3 دکتری شیلات، بخش آبزی‌پروری، پژوهشکده آبزی‌پروری آب‌های داخلی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی (AREEO)، بندرانزلی، ایران

4 دکتری شیلات، گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه‌سرا، ایران

5 استاد گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه‌سرا، ایران

6 استاد گروه علوم دریایی، پژوهشکده حوضه آبی خزر، دانشگاه گیلان، رشت، ایران

10.22124/japb.2023.24539.1497

چکیده

این بررسی به منظور تعیین اثر hCG، اواپریم و اواریم بر بازدهی تکثیر مصنوعی ماهی سوف حاج طرخان (Perca fluviatilis) و همچنین بررسی شاخص‌های اسپرم‌شناختی این ماهی انجام گرفت. در تیمار اول از هورمون hCG به میزان 500 واحد بین­المللی به ازای هر کیلوگرم وزن بدن مولدین، در تیمارهای دوم و سوم به ترتیب از هورمون­های اواپریم و اواریم به میزان 5/0 میلی­لیتر به ازای هر کیلوگرم وزن بدن مولدین و در تیمار شاهد از سرم فیزیولوژی به میزان 5/0 میلی­لیتر به ازای هرکیلوگرم وزن بدن مولدین استفاده شد. در هر تیمار از 18 قطعه مولد ماده با میانگین وزن تقریبی 78 گرم استفاده شد. القای مولدین نر نیز به وسیله تزریق هورمون hCG به میزان 250 واحد بین­المللی به ازای هر کیلوگرم وزن بدن مولدین انجام گرفت. طبق نتایج سریع­ترین زمان رسیدگی مولدین ماده (6/415 درجه- ساعت) در تیمار hCG مشاهده شد و تفاوت قابل ملاحظه­ای با تیمارهای دیگر نشان داد (05/0P<). بالاترین درصد پاسخ­دهی (100 درصد) در تیمارهای hCG و اواپریم مشاهده شد و تفاوت معنی‌داری با تیمار اواریم و شاهد نشان داد (05/0P<). در شاخص‌های دیگر تفاوت معنی­داری بین تیمارهای آزمایشی مشاهده نشد (05/0P>). بر اساس نتایج، میانگین حجم اسپرم، درصد تحرک اسپرم، مدت زمان فعالیت اسپرم و میزان اسپرماتوکریت به ترتیب 7/1±9/2 میلی‌لیتر، 4/13±1/91 درصد، 6/18±4/84 ثانیه و 4/9±3/68 درصد اندازه­گیری شد. نتایج این بررسی نشان داد هورمون hCG برای القای تخم­ریزی و تکثیر مصنوعی مولدین سوف حاج طرخان از هورمون‌های اواپریم و اواریم مناسب­تر است. با توجه به اثرات مطلوب­تر هورمون hCG توصیه می­شود از این هورمون در القای تخم­ریزی و تکثیر مصنوعی مولدین سوف حاج طرخان استفاده شود.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Akbari Nargesi E. 2022. Reproductive performance and physiological changes of the Caspian roach, Rutilus caspicus broodstocks under controlled conditions after induction with Ovopel and Ovaprim (In Persian). Ph.D. Thesis, University of Guilan, Iran. 119P.
Akbari Nargesi E. and Gorouhi D. 2024. Ovarian lavage/artificial insemination method as an alternative approach for controlled reproduction of the northern pike (Esox lucius). Animal Reproduction Science, 263: 1–8 (107454). doi: 10.1016/j.anireprosci. 2024.107454
Akbari Nargesi E., Falahatkar B. and Zarski D. 2022. Artificial reproduction of Caspian roach, Rutilus caspicus following stimulating ovulation with Ovaprim, Ovopel, and their combinations under controlled conditions. Animal Reproduction Science, 238: 1–9 (106932). doi: 10.1016/j.anireprosci.2022.106932
Akbari Nargesi E., Falahatkar B., Zarski D. and Gorouhi D. 2023. The effectiveness of Ovaprim, Ovopel, and their combinations in artificial reproduction of common rudd Scardinius erythrophthalmus under controlled conditions. Theriogenology, 199: 114–120. doi: 10.1016/j.theriogenology.2023.0 1.014
Akbari Nargesi E., Gorouhi D. and Falahatkar B. 2021. The effect of oil-emulsified Ovaprim™ on spawning induction and artificial reproduction of bream (Abramis brama) female broodstock (In Persian). Aquatic Physiology and Biotechnology, 8: 1–18. doi: 10.22 124/japb.2021.12181.1301
Akbari Nargesi E., Gorouhi D. and Falahatkar B. 2024. Efficacy of sGnRHa in combination with domperidone on the sperm quality, seminal fluid metabolites, and fertilization ability of spermatozoa in Caspian kutum, Rutilus frisii. Aquaculture International, 32: 817–832. doi: 10.1007/s10499-023-01189-2
Alavi S.M.H., Rodina M., Hatef                  A., Stejskal V., Policar T., Hamackova J. and Linhart O. 2010. Sperm motility and monthly variations of semen characteristics in Perca fluviatilis (Teleostei: Percidae). Czech Journal of Animal Science, 55: 174–182.
Alavi S.M.H., Rodina M., Policar T., Kozak P., Psenicka M. and Linhart O. 2007. Semen of Perca fluviatilis L.: Sperm volume and density, seminal plasma indices and effects of dilution ratio, ions and osmolality on sperm motility. Theriogenology, 68: 276–283. doi: 10.1016/j.theriogenology.2007.05.045
Falahatkar B., Akbari Nargesi E., Gorouhi D. and Efatpanah I. 2019. Effect of Ovaprim™ and hCG on spawning induction of Eurasian perch (Perca fluviatilis Linnaeus, 1758) female broodstock (In Persian). Aquaculture Sciences, 6: 13–22.
Henrotte E., Kaspar V., Rodina M., Psenicka M., Linhart O. and Kestemont P. 2010. Dietary n-3/n-6 ratio affects the biochemical composition of Eurasian perch (Perca fluviatilis) semen but not indicators of sperm quality. Aquaculture Research, 41: 31–38. doi: 10.1111/j.1365-2109.2009.02452. x
Kouril J. and Linhart O. 1997. Temperature effect on hormonally induced spawning in perch (Perca fluviatilis). Polskie Archiwum Hydrobiologii, 44: 197–202.
Kouril J., Linhart O. and Reiot P. 1997. Induced spawning of perch by means of a GnRH analogue. Aquaculture International, 5: 375–377. doi: 10.1023/A:1018372309232
Krol J., Glogowski J., Demska-Zakes K. and Hliwa P. 2006. Quality of semen and histological analysis of testes in Eurasian perch Perca fluviatilis L. during a spawning period. Czech Journal of Animal Science, 51: 220–226. doi: 10.17221/3932-CJAS
Kucharczyk D., Kujawa R., Mamcarz A., Skrzypczak A. and Wyszomirska E. 1998. Induced spawning in perch, Perca fluviatilis L. using FSH+LH with pimozide        or metoclopramide. Aquaculture Research, 29: 131–136. doi: 10.10 46/j.1365-2109.1998.00949.x
Kucharczyk D., Kujawa R., Murmurz A., Skrzypczak A. and Wyszomirska E. 1996. Induced spawning in perch, Perca fluviatilis L. using carp pituitary extract and hCG. Aquaculture Research, 27: 847–852. doi: 10.1046/j.1365-2109. 1996.t01-1-00802.x
Kucharczyk D., Szczerbowski A., Luczynski M.J., Kujawa R., Mamcarz A., Wyszomirska E., Szabo T. and Ratajski S. 2001. Artificial spawning of Eurasian perch, Perca fluviatilis L. using ovopel. Fisheries and Aquatic Life, 9: 39–49.
Kucharczyk D., Targonska K. and Chwaluczyk R. 2014. Application of Ovaprim in artificial reproduction of Eurasian perch, Perca fluviatilis L. under controlled conditions. Iranian Journal of Ichthyology, 1: 7–11. doi: 10.22034/iji.v1i1.10
Mylonas C.C., Fostier A. and Zanuy S. 2010. Broodstock management and hormonal manipulations of        fish reproduction. General and Comparative Endocrinology, 165: 516–534. doi: 10.1016/j.ygcen.2009. 03.007
Targonska K., Szczerbowski A., Zarski D., Luczynski M.J., Szkudlarek M., Gomułka P. and Kucharczyk D. 2014. Comparison of different spawning agents in artificial out‐of‐season spawning of Eurasian perch, Perca fluviatilis L. Aquaculture Research, 45: 765–767. doi: 10.1111/are.12010
Zarski D., Horvath A., Bernath G., Krejszeff S., Radoczi J., Palinska-Zarska K., Bokor Z., Kupren K. and Urbanyi B. 2017. Controlled Reproduction of Wild Eurasian Perch: A Hatchery Manual. Springer International Publishing, Switzerland. 102P. doi: 10.1007/978-3-319-49376-3
Zohar Y. 2021. Fish reproductive biology- Reflecting on five decades of fundamental and translational research. General and Comparative Endocrinology, 300: 1–15 (113544). doi: 10.1016/j.ygcen.2020. 113544
Zohar Y., Zmora N., Trudeau V.L., Munoz-Cueto J.A. and Golan M. 2022. A half century of fish gonadotropin-releasing hormones: Breaking paradigms. Journal of Neuroendocrinology, 34: 1–33 (e13069). doi: 10.1111/jne.13069