اثر شوری‌های مختلف بدون سازگاری بر الکترولیت‌های خون و ساختار بافت‌های آبشش و کلیه در ماهی باس دریایی آسیایی (Lates calcarifer)

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 کارشناس ارشد شیلات، گروه شیلات، دانشکده علوم و فناوری نانو و زیستی، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران

2 دانشیار گروه شیلات، دانشکده علوم و فناوری نانو و زیستی، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران

3 دانشیار گروه شیلات و زیست‌شناسی دریا، پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران

4 دانشیار گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران

10.22124/japb.2024.27017.1535

چکیده

هدف از این مطالعه بررسی تاثیرات شوری­های مختلف بدون سازگاری بر الکترولیت‌های خون و ساختار بافت­های آبشش و کلیه در ماهی باس دریایی آسیایی (Lates calcarifer) است. تعداد 180 قطعه بچه ماهی باس دریایی آسیایی با میانگین وزن اولیه 1±34 به صورت کاملا تصادفی انتخاب و در چهار تیمار، هر یک با سه تکرار شامل تیمارهای 1 تا 4 (شوری 0، 15، 35 و 50 گرم در لیتر) توزیع شدند. نمونه‌برداری از ماهیان در ساعت‌های 6، 24، 72 و 120 انجام گرفت. هیچ گونه تلفاتی در طول دوره آزمایش مشاهده نشد. نتایج مطالعه حاضر نشان داد که شوری­های مختلف در میزان اسمولاریته و یون­های سدیم، پتاسیم و کلر خون ماهی باس دریایی آسیایی تغییرات معنی‌داری را در ساعت­های مختلف آزمایش ایجاد کرد (05/0P<). در بافت آبشش تیمارهای شوری 0، 15 و 35 گرم در لیتر عوارضی چون نکروز اپیتلیال و چسبندگی لاملاها نسبت به تیمار شوری 50 گرم در لیتر مشاهده شد. همچنین در بافت کلیه تیمارهای شوری 0، 15 و 35 گرم در لیتر عوارضی چون افزایش مراکز ملانوماکروفاژها، بزرگ شدگی کپسول بومن، افزایش فضا در مرکز گلومرول و سلول‌های نکروز در بافت خون‌ساز در مقایسه با تیمار شوری 50 گرم در لیتر مشاهده شد. بیشترین آسیب بافتی آبشش و کلیه در این ماهیان متعلق به گروه شوری صفر گرم در لیتر و کمترین میزان آن متعلق به گروه شوری 50 گرم در لیتر بود. نتایج نشان داد شوری­های مختلف بدون سازگاری می‌تواند موجب تغییر الکترولیت‌های خون و ساختار بافت­های آبشش و کلیه در ماهی باس دریایی آسیایی شود.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Ali A., Azom M.G., Sarker B.S., Rani H., Alam M.S. and Sadiqul Islam M. 2022. Repercussion of salinity on hematological parameters and tissue morphology of gill and kidney at early life of tilapia. Aquaculture and Fisheries, 9(2): 256–264. doi: 10.1016/j.aaf.20 22.04.006
Azodi M., Bahabadi M.N., Ghasemi A., Morshedi V., Torfi Mozanzadeh M., Shahraki R., Khademzadeh O., Hamedi S. and Avizhgan S. 2021. Effects of salinity on gills’ chloride cells, stress indices, and gene expression of Asian sea bass (Lates calcarifer, Bloch, 1790). Fish Physiology and Biochemistry, 47: 2027–2039. doi: 10.1007/s10695-021-01024-6
Camargo M.M.P. and Martinez C.B.R. 2007. Histopathology of gills, kidney and liver of a Neotropical fish caged in an urban stream. Neotropical Ichthyology, 5: 327–336. doi: 10.1590/S1679-622 52007000300013
Evans D.H. 1997. The Physiology of Fishes. CRC Press, USA. 519P.
Evans D.H., Piermarini P.M. and Choe K.P. 2005. The multifunctio-nal fish gill: Dominant site of gas exchange, osmoregulation, acid-base regulation, and excretion of nitrogenous waste. Physiological Reviews, 85: 97–177. doi: 10.1152/ physrev.00050.2003
FAO. 2018. The State of World Fisheries and Aquaculture. Food and Agriculture Organization of the United Nation, Italy. 209P.
Farshadian R., Salati A.P., Keyvanshokooh A. and Pasha-Zanoosi H. 2019. Physiological responses of yellowfin seabream (Acanthopagrus latus) to acute salinity challenge. Marine and Freshwater Behaviour and Physiology, 51(5): 313–325. doi: 10.1080/10236244.2019.1573638
Farshadian R., Salati A.P., Keyvan-Shokuh S., Pasha Zanusi H. and Negin-Taji A. 2017. Short-term exposure to different salinity      levels and its effects on gill tissue in yellowfin seabream (Acanthopagrus latus). Iranian Journal of Biology, 31: 304–315.
Fielder D.S., Allan G.L., Pepperall D. and Pankhurst P.M. 2007. The effects of changes in salinity on osmoregulation and chloride cell morphology of juvenile Australian snapper, Pagrus auratus. Aquaculture, 272: 656–666. doi: 10.1016/j.aquaculture.2007.08.043
Fiol D.F. and Kultz D. 2007. Osmotic stress sensing and signaling in fishes. The FEBS Journal, 274: 5790–5798. doi: 10.1111/j.1742-465 8.2007.06099.x
Flores A.M. and Mark Shrimpton J. 2012. Differential physiological and endocrine responses of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, transferred from fresh water to ion-poor or salt water. General and Comparative Endocrinology, 175(2): 244–250. doi: 10.1016/j.ygcen.2011.11.002
Hamedi S., Rahimi R., Nafisi Bahabadi M., Azodi M. and Soleimani Z. 2016. Effects of different salinity levels on histopathological changes in the kidney tissue of Asian sea bass (Lates calcarifer). Iranian Journal of Natural Resources, 69: 331–339. doi: 10.22059/jfisheries.2016.61628
Hossain F., Majharul Islam S.M., Sadiqul Islam M.D. and Shahjahan M.D. 2022. Behavioral and histo-pathological indices of striped catfish (Pangasionodon hypophthalmus) exposed to different salinities. Aquaculture Reports, 23: 1–8 (101038). doi: 10.1016/j.aqrep.2022.101038
Hwang P.P. and Lee T.H. 2007. New insights into fish ion regulation and mitochondrionrich cells. Comparative Biochemistry and Physiology (A), 148: 479–497. doi: 10.1016/j.cbpa.2007.06.416
Hwang P.P., Sun C.M. and Wu S.M. 1989. Changes of plasma osmolality, chloride concentration and gill NaK-ATPase activity in tilapia Oreochromis mossambicus during seawater acclimation. Marine Biology, 100: 295–299. doi: 10.1007/BF00391142
Jarvis P.L. and Ballantyne J.S. 2003. Metabolic responses to salinity acclimation in juvenile shortnose sturgeon Acipenser brevirostrum. Aquaculture, 219: 891–909. doi: 10.1016/S0044-8486 (03)00063-2
Kaneko T., Watanabe S. and Lee K.M. 2008. Functional morpho-logy of mitochondrion-rich cells in euryhaline and stenohaline teleosts. Aqua-BioScience Monographs, 1: 1–62. doi: 10.5047/absm.2008.00101. 0001
Khodabandeh S., Charmantier G. and Charmantier-Daures M. 2006. Immunolocalization of Na+/K+-ATPase in osmoregulatory organs during the embryonic and post-embryonic development of the lobster Homarus gammarus. Journal of Crustacean Biology, 26: 515–523. doi: 10.1651/S-2669.1
Lin C.H. and Lee T.H. 2005. Sodium or potassium ions activate different kinetics of gill Na, K-ATPase in three seawater- and freshwater-acclimated euryhaline teleosts. Journal of Experimental Zoology, 303: 57–65. doi: 10.1002/jez.a.130
Lisboa V., Barcarolli I.F., Sampaio L.A. and Bianchini A. 2015. Effect of salinity on survival, growth and biochemical parameters in juvenile Lebranch mullet Mugil liza (Perciformes: Mugilidae). Neotropical Ichthyology, 13: 447–452. doi: 10. 1590/1982-0224-20140122
Marshall W.S. 2002. Na+, Cl, Ca2+ and Zn2+ transport by fish gills: Retrospective review prospective synthesis. Journal of Experimental Zoology, 293: 264–283. doi: 10.100 2/jez.10127
McCormick S.D. 1995. Hormonal control of gill Na+, K+-ATPase and chloride cell function. Fish Physiology, 14: 285–315. doi: 10.10 16/S1546-5098(08)60250-2
Mohamed N.A., Saad M.F., Shukry M., El-Keredy A.M.S., Nasif O., Van Doan H. and Dawood M.A.O. 2021. Physiological and ion changes of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) under the effect of salinity stress. Aquaculture Reports, 19: 1–7 (100567). doi: 10.1016/j.aqrep.2020. 100567
Moorman B.P., Lerner D.T., Gordon Grau E. and Seale A.P. 2015. The effects of acute salinity challenges on osmoregulation in Mozambique tilapia reared in a tidally changing salinity. Journal of Experimental Biology, 218: 731–739. doi: 10.1242/jeb.112664
Nordlie F.G. 2009. Environmental influences on regulation of blood plasma/serum components in teleost fishes: A review. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 19: 481–564. doi: 10.1007/s11160-009-9131-4
Paterson B.D., Rimmer M.A., Meikle G.M. and Semmens G.L. 2003. Physiological responses of the Asian sea bass, Lates calcarifer to water quality deterioration during simulated live transport: Acidosis, red-cell swelling, and levels of ions and ammonia in the plasma. Aquaculture, 218: 717–728. doi: 10.1016/S0044-8486(02)00 564-1
Reid S.G., Sundin L. and Milson W.K. 2006. The cardiorespiratory system in tropical fishes: Structure, function, and control. Val A.L., De Almeida-Val V.M.F. and Randall D.J. (Eds.). The Physiology of Tropical Fishes. Elsevier, Netherlands. 634P. doi: 10.1016/S1 546-5098(05)21006-3
Shui C., Shi Y.H., Hua X. M., Zhang Z.H., Zhang H.M., Lu G. and Xie Y.D. 2018. Serum osmolality and ions, and gill Na+/K+-ATPase of spottedtail goby Synechogobius ommaturus (R.) in response to acute salinity changes. Aquaculture and Fisheries, 3(2): 79–83. doi: 10. 1016/j.aaf.2018.03.002
Soegianto A., Haikal Adhim M., Zainuddin A., Widyaleksono T., Putranto C. and Irawan B. 2017. Effect of different salinity on serum osmolality, ion levels and hematological parameters of East Java strain tilapia Oreochromis niloticus. Marine and Freshwater Behaviour and Physiology, 50(2): 1–9. doi: 10.1080/10236244.2017.133 3391
Stewart H.A., Noakes D.L., Cogliati K.M., Peterson J.T., Iversen M.H. and Schreck C.B. 2016. Salinity effects on plasma ion levels, cortisol, and osmolality             in Chinook salmon following                      lethal sampling. Comparative Biochemistry and Physiology (A), 192: 38–43. doi: 10.1016/j.cbpa.20 15.11.011
Toorchi M., Bani A. and Alizadehsabet H. 2012. Effects of salinity on osmoregulation and plasma cortisol levels of juvenile Caspian trout, Salmo trutta caspius Kessler, 1877. Journal of Applied Ichthyology, 28: 130–134. doi: 10.1 111/j.1439-0426.2011.01818.x
Varsamos S., Bonga S.E.W., Charmantier G. and Flik G. 2004. Drinking and Na+/K+ ATPase activity during early development of European sea bass, Dicentrarchus labrax: Ontogeny and short-term regulation following acute salinity changes. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 311: 189–200. doi: 10.1016/j.jembe.2004.04.0 19
Varsamos S., Diaz J.P., Charmantier G., Flik G., Blasco C. and Connes R. 2002. Branchial chloride cells in sea bass (Dicentrarchus labrax) adapted to freshwater, seawater, and doubly concentrated seawater. Journal of Experimental Zoology (A), 293: 12–26. doi: 10.1002/jez.10099
Zapata A., Diez B., Cejalvo T., Gutierrez-de Frias C. and Cortes A. 2006. Ontogeny of the immune system of fish. Fish and Shellfish Immunology, 20: 126–136. doi: 10. 1016/j.fsi.2004.09.005