نقش هورمون‌های سنتتیک در زادآوری کپور ماهی هندی مریگال Cirrhinus cirrhosus

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 استادیار پژوهشکده آبزی‌پروری آب‌های جنوب کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران

2 مربی پژوهشکده آبزی‌پروری آب‌های جنوب کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران

10.22124/japb.2024.26558.1527

چکیده

مریگال Cirrhinus cirrhosus یکی از سه گونه مهم کپورماهیان هندی در سیستم پرورش ماهیان گرمابی در دنیا محسوب می شود. برای تنوع بخشی به سیستم آبزی‌پروری ماهیان گرمابی، گونه‌های کپورماهیان هندی در سال 1387 به ایران وارد شدند. به منظور مقایسه شاخص‌های تکثیر از هورمون‌های القای تخم‌ریزی برای 40 قطعه مولد ماده با میانگین وزن و طولکل به ترتیب 31/5±69/3212 گرم و 32/3±38/635 سانتی‌متر استفاده شد. دمای مناسب تکثیر 5/28-28 درجه سانتی­گراد ثبت شد. از هورمون‌های سنتتیک القای تخم‌ریزی اواپاس (ساخت ایران) و اواپریم و عصاره هیپوفیز برای تحریک تخم‌ریزی استفاده شد. به گروه شاهد سرم فیزیولوژی تزریق شد. تزریق به صورت عضلانی و در یک مرحله انجام گرفت. شاخص‌های تکثیر در گروه‌های مختلف مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد درصد موفقیت تخم‌ریزی در گروه‌های یاد شده به ترتیب100، 90 و 80 درصد بود و در گروه شاهد مولدین به تزریق پاسخ ندادند. دوره پنهان 8-5/6 ساعت محاسبه شد که کمترین زمان در گروه هورمون اواپاس بود. ماهی مریگال تخم‌های غیرچسبنده داشت. تعداد تخم در گرم و در میلی‌لیتر و اندازه تخم استحصال شده، لقاح یافته و آب‌کشیده تفاوت معنی‌داری را در گروه‌های مختلف نشان نداد. میانگین درصد لقاح 33/5±2/91، درصد تخم‌گشایی 7/1±66/80 و درصد بازماندگی لارو 83/2±81/70 محاسبه شد. زمان شروع خروج لارو از تخم 16 ساعت و 20 دقیقه پس از لقاح بود. اندازه لارو تازه تخم‌گشایی شده 06/0±55/4 میلی‌متر بود. داده‌های تکثیر نشان دهنده آن است که هورمون اواپاس می‌تواند جایگزین خوبی برای هورمون‌های وارداتی مثل اواپریم و عصاره هیپوفیز باشد. نتایج به دست آمده در تعیین بیوتکنیک تکثیر ماهی مریگال، می‌تواند در توسعه تکثیر و پرورش این گونه و معرفی به سیستم آبزی‌پروری کشور مورد استفاده قرار گیرد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Arabaci M. and Sari M. 2004. Induction of ovulation in endemic pearl mullet (Chalcalburnus tarichi), living in the highly alkaline Lake Van, using GnRHa ([D-Ser (tBu)6, Pro9-Net]-GnRH) combined with haloperidol. Aquaculture, 238: 529–535. doi: 10.1016/j.aquaculture.2004.05.004
Bosak Kahkesh F., Yooneszadeh Feshalami M., Amiri F. and Nickpey M. 2010. Effect of ovaprim, ovatide, HCG, LHRH-A2, LHRHA2+CPE and carp pituitary in benni (Barbus sharpeyi) artificial breeding. Global Veterinaria, 5(4): 209–214.
Bosak Kahkesh F., Yooneszadeh M., Amiri F. and Nickpey M. 2011. Survey of different hormones on final maturation in shirbut (Barbus grypus Heckel, 1843). World Journal of Fish and Marine Sciences, 3(6): 548–552.
Brzuska E. 2021. Reproduction effectiveness of carp (Cyprinus carpio L.) from the Hungarian W breeding line after stimulating ovulation with spawning inducing agents of natural (CPH, hCG, PMSG) and/or synthetic origin (ovopel, dagin, ovaprim, mGnRH-a). Aquaculture, 532(1-2): 1–11 (736023). doi: 10.1016/j.aquaculture. 2020.736023
Chakraborty R.D. and Murty D.S. 1972. Life history of Indian major carps, Cirrhinus mrigala (HAM.), Catla catla (HAM.) and Labeo rohita (HAM.). Journal of Inland Fish Society, 6: 133–161.
Dorafshan S., Mostafavi H. and Amiri B.M. 2003. Induction of spawning in common carp (Cyprinus carpio) using pituitary extract and GnRH analogue in combination with domperidone. Iranian Journal of Biotechnology, 1: 213–217.
Drori S., Ofir M., Sivan B.L. and Yaron Z. 1994. Spawning induction in common carp (Cyprinus carpio) using pituitary extract or GnRH superactive analogue combined with methoclopramide: Analysis of hormone profile, progress of oocyte maturation and dependence on temperature. Aquaculture, 119: 393–407. doi: 10.1016/0044-8486 (94)90303-4
FAO. 2022. The State of World Fisheries and Aquaculture 2022. Towards Blue Transformation. FAO, Italy. 266P. doi: 10.4060/cc04 61en
Haniffa M.A.K. and Sridhar S. 2002. Induced spawning of spotted murrel (Channa punctatus) and catfish (Heteropneustes fossilis) using human chorionic gonadotropin and synthetic hormone (ovaprim). Veterinarski Arhiv, 72(1): 51–56.
Heyrati F.P., Mostafavi H., Toloee H. and Dorafshan S.  2007. Induced spawning of kutum, Rutilus frisii kutum (Kamenskii, 1901) using (D-Ala6,Pro9-Net) GnRHa combined with domperidone. Aquaculture, 265: 288–293. doi: 10.1016/j.aquaculture. 2006.12.011
Hill J.E., Kilgore K.H., Pouder D.B., Powell J.F.F., Watson C.A. and Yanong R.P.E. 2009. Survey of ovaprim use as a spawning aid in ornamental fishes in the United States as administered through the University of Florida Tropical Aquaculture Laboratory. North American Journal of Aquaculture, 71(3): 206–209. doi: 10.1577/FA04-015.1
Hosseinzadeh Sahafi H., Ahmadnezhad M. and Yelghi S. 2019. A review of hormone used in aquaculture and a variety of hormonal administration methods in Iran. Advanced Aquaculture Science Journal, 3(1):17–34.
Jhingran V.G. 1968. Synopsis of biological data on Catla catla (Hamilton, 1822). FAO Fisheries Synopsis, No. 32. 88P.
Jhingran V.G. and Khan H.A. 1979. Synopsis of biological data on the mrigal Cirrhinus mrigala (Hamilton, 1822). FAO Fisheries Synopsis, No. 120. 78P.
Jhingran V.G. and Pullin R.S.V. 1985. A Hatchery Manual for the Common, Chines and Indian Major Carps. Asian Development Bank, Philippines. 171P.
Khan R.A. 1972. Studies on the biology of some important major carps. Thesis, Aligarh Muslim University, India. 185P.
Kouril J., Mraz J., Hamackova J. and Barth T. 2008. Hormonal induction of tench (Tinca tinca L.) ovulation with the same treatments over two consecutive reproductive seasons. Cybium, 32(2): 61.
Kulikovsky Z., Martin F.J.B. and Yaron Z. 1996. A comparison of two spawning inducing agent for common carp. Israel Journal of Aquaculture Bamidgeh, 48: 108–111. doi: 10.1016/0044-486(94)9030 3-4
Leroy Creswell R. 2000. Aquaculture Desk Reference. Florida Aqua Farm Inc, USA. 206P.
Miah M.I., Harun M.S., Rahman M.M., Haque M.R. and Hossain M.A. 2009. Study on the embryonic and larval development of an endangered species of bata (Labeo bata). International Journal of Sustainable Crop Production, 4(1): 72–82.
Mohammadian T., Kochanian P., Nikou S., Sheikholeslami M., Bita S., Eskandari G. and Abhari Segonbad H. 2009. Comparison of the effects of GnRH hormone analog combined with antidopamine domperidone (Ova-fact) by the Linpe method, with common carp pituitary extract (CPE) on reproductive indices of Barbus sharpeyi. Iranian Veterinary Journal, 5(23): 70–80.
Mohapatra B.C., Mahanta S.K., Sahu H., Majhi D. and Barik N.K. 2016. Induced breeding of Indian major carps in FRP hatchery at farmer’s field. International Journal of Applied Science, 3(5): 249–257.
Mookerjee H.K. 1945. Life history of some major carps of Bengal. Science Culture, 10(9): 400–402.
More P.R., Bhandare R.Y., Shinde S.E., Pathan T.S. and Sonawane D.L. 2010. Comparative study of synthetic hormones Ovaprim and carp pituitary extract used in Induced breeding of Indian major carps. Libyan Agriculture Research Center Journal International, 1: 288–295.
Mortezavizadeh S.A., Moazedi J., Youneszadeh Feshalami M. and Jorfi E. 2011. Determination of artificial propagation biotechnic of Barbus xanthopterus. Iranian Fisheries Science Research Institute, 19(4): 137–142. doi: 10.22 092/ISFJ.2017.109967
Mortezavizadeh S.A., Yooneszadeh Feshalami M. and Bosak Kahkesh F. 2010. Effect of GnRHa (Ala6, des-Gly10 mGnRHa), LHRH-a (des-Gly10, [D-Ala6] LH-RH Ethylamid) and carp pituitary in artificial propagation of gattan, Barbus xanthopetru (Heckel, 1843). World Journal of Fish and Marine Sciences, 2(4): 280–284.
Mylonas C.C. and Zohar Y. 2007. Use of GnRHa-delivery systems for the control of reproduction in fish. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 10: 463–491. doi: 10.10 23/A:1012279814708
NACA. 1989. Integrated Fish Farming in China. NACA Technical Manual 7. A World Food Day Publication of The Network of Aquaculture Centers in Asia and the Pacific, Thailand. 278P.
Naeem M., Salam A., Diba F. and Saghir A. 2005. Fecundity and induced spawning of silver carp, Hypophthalmichthys molitrix by using a single intramuscular injection of ovaprim-C at fish hatchery Islamabad, Pakistan. Pakistan Journal of Biological Science, 8(8): 1126–1130. doi: 10.3923/pjbs.2005.1126.1130
Nandeesha M.C., Das S.K., Nathaniel D.E. and Varghese T.J. 1990. Breeding of carps with ovaprim in India. Indian Journal of Marine Sciences, 21(1): 87–87.
Natarajan A.V. and Jhingran A.G. 1963. On the biology of Catla catla (Ham.) from tile river Yamuna. Proceedings of the National Academy of Sciences, India (B), 29(3): 326–355.
Pathak R.K., Gopesh A. and Dwivedi A.C. 2015. Invasion Potential and Biology of Cyprinus carpio (Common Carp). LAP LAMBERT Academic Publishing, Germany. 192P.
Peter R.E., Lin H.R. and Van Der Kraak G. 1988. Induced ovulation and spawning in cultured fresh water fish in China: Advanced in application of GnRH analogue and dopamine antagonists. Aquaculture, 74: 1–10. doi: 10.101 6/0044-8486(88)90080-4
Podhorec P. and Kouril J. 2009. Induction of final oocyte maturation in Cyprinidae fish by hypothalamic factors: A review. Veterinarni Medicina, 54(3): 97–110. doi: 10.17221/50/2009-VETM ED
Rainis S. and Ballestrazzi R. 2005. The control of reproduction in finfish species through GnRH treatments. Italian Journal of Animal Science, 4: 345–353. doi: 10.4081/ijas.2005.345
Rokade P., Ganeshwade R.M. and Somwane S.A. 2006. A comparative account on the induced breeding of major carp Cirrhina mrigala by pituitary extract and ovaprim. Journal of Environmental Biology, 27(2): 309–310.
Sarkar U.K., Negi R.S., Deepak P.K., Singh S.P., Srivastava S.M. and Roy D. 2004. Captive breeding of vulnerable Indian carp Cirrhinus reba with ovaprim for conservation of wild populations. Aquaculture Asia, 9: 5–7.
Sehgal H.S. and Toor H.S. 1991. Offspring fitness and fecundity of an Indian major carp, Labeo rohita (Ham), in relation to egg size. Aquaculture, 97: 269–279. doi: 10. 1016/0044-8486(91)90269-D
Weil C., Fostier A. and Billard R. 1986. Induced spawning (ovulation and spermiation) in carp and related species. P: 119–137. In: Billard R. and Marcel J. (Eds.). Aquaculture of Cyprinids. INRA, France. doi: 10.1016/0044-8486(94)9 0303-4
Youneszadeh Feshalami M., Mortazavizadeh S.A. and Hosseinzadeh Sahafi H. 2024. Breeding and reproduction bio-techniques of Indian carp (Catla catla) with synthetic spawning-inducing hormone. Aquatic Physiology and Biotechnology, 12(3): 117–132. doi: 10.22124/japb. 2024.26545.1526